最近在处理一批RNA-seq的数据，里面混入了spike-in。利用spike-in矫正之后，样本A的基因表达量普遍比样本B的基因表达量高3-5倍，这和我所熟知的背景知识是一致的。
    但是当我使用DESeq2对基因表达量进行差异表达分析时，上调的基因和下调的基因竟然相差无几，都有两三千个……这不符合逻辑啊，前前后后思考了一遍，发现是我对DESeq2的理解太浅的缘故。
    太长不看系列
    spike-in是已知的其他物种基因组，可以对基因表达数据进行绝对值的矫正
    个人认为，FPKM/RPKM/TPM都是基因的相对表达值
    DESeq2会对测序深度进行矫正，将普遍高表达的样本A看作是测序深度过高所导致，从而影响差异基因的筛选

    废话超多系列
    RNA的spike-in是一组序列已知的RNA转录本，目前普遍使用的是ERCC( The External RNA Control Consortium)搞出来的一组RNA序列。当然，也可以使用序列相似度较低的物种的序列作为spike-in。如两种常见的酵母，S.pombe和S. cerevisiae，他们的序列可以作为彼此的spike-in进行后续矫正。
    通过在样品制备过程中，混入指定数量的spike-in，我们就可以知道不同样本中的基因绝对比表达值。
    如等细胞数的样本A和样本B，在每个样本中，我加入了等量的spike-in。最后分析发现，spike-in占样本A的1%，但是占样本B的5%。这表明样本A的RNA表达量也许普遍比样本B的表达量高五倍左右。
    下面是一个简单的草图，希望可以帮助理解，左边是细胞，右边是RNA
    image.png
    说完了spike-in矫正的原理，接下来讲讲DESeq2文库矫正的原理。
    常用的normalization方法有FPKM/RPKM/TPM，但是这些方法只能对测序深度和基因长度进行矫正，没有考虑样本的文库组成成分可能对表达量产生的影响。这里举一个例子：
    image.png
    看起来两个不同的样本之间除了基因A1CF，其余基因都是差异表达的。但事实上，这是由于样本A中A2M表达量过高，导致样本中其他基因的相对表达量较低。如果我们把两个样本中的A2M基因去除，重新计算FPKM，我们会发现两个样本中其他五个基因的表达量其实相差无几。
    因此DESeq2需要解决两个问题：
    1、样本的测序深度
    2、样本的文库组成
    这里以一个简单的例子讲解一下DESeq2是如何解决这两个问题的。
    首先对样本量进行以自然对数为底数的log转换：
    image.png
    DESeq2除了可以使用，还可以使用和，但因为R默认的log是以e为底数，因此这里使用。我曾经画图时为了偷懒使用，导致组会上被老板批评，因为搞生信的前辈们普遍喜欢使用或者进行对数转换。我太难了╥﹏╥…
    注：我们可以看到，表达量为0的值在去对数之后，变成了负无穷。
    对每一行的值进行平均值计算
    image.png
    第二列和第三列都比较好理解，第一列因为样本1的gene1的log值是-inf，因此gene1这一列的平均值也是-inf。这里还有一点值得关注，当我们将gene3的平均表达的log转换为正常数值时，≈73.7，而对基因表达值的原始矩阵计算得到的平均值为(33 55 200)/3=96。
    我们可以看到96>73.7，因此这种取对数的方法可以使得基因更不容易受到异常值的影响。事实上这种取完log之后做平均的方法，计算的是几何平均数
    移除具有-inf值的基因
    image.png
    当一个样本或者多个样本中基因的表达量为0时，这个基因就会被移除。
    事实上，通过这个可以让我们最后的基因表达矩阵更加集中于管家基因（house-keeping gene）
    对基因的reads count取log并减去基因的log值的平均数，具体如下：
    image.png
    通过这个计算方式，我们将得到每个样本中geneX的表达水平与 geneX在所有样本平均表达水平的比值
    计算步骤四所得的样本表达矩阵中，每个样本中的基因表达中位数
    这里使用中位数，可以进一步减少异常值对于scale factor(校正因子)的影响。至于为什么中位数有这个好处，我想这里应该不需要详细阐述了
    image.png
    将步骤5计算的每个样本的中位数，进行指数计算
    image.png
    通过该方法，我们最终得到了样本的校正因子(scale factor)
    将原始样本表达矩阵除以步骤6所得到的scale factor
    image.png
    以上七步就是DESeq2对于样本文库矫正的方法，
    为避免文章太长，对前文有所遗忘。我们在这里再简单的叙述一下，DESeq2对于样本文库的矫正做了些什么：
    1、使用log转换，去除那些只在某几个样本中表达的基因，也减少了极端值对于最终结果的影响
    2、取每个样本的中位数，进一步减少极端值的影响，使得结果更加关注于在多个样本中稳定表达的基因
    通过对上述DESeq2的文库normalization方法的学习，我了解到我的RNA-seq数据是受到了DESeq2自动文库矫正的影响。这个是可以关闭的
    这可真是个bug啊，DESeq2明明是好心却办出错了事，无奈我只能使用logFoldChange和T检验的方法筛选差异表达基因……

    作者：小白要变大神
    链接：https://www.jianshu.com/p/c5473644e89f
    来源：简书
    著作权归作者所有。商业转载请联系作者获得授权，非商业转载请注明出处。