大家都知道,这十几年来最流行的差异分析软件就是R的limma包了,但是它以前只支持microarray的表达数据。
考虑到大家都熟悉了它,它又发了一个voom的方法,让它从此支持RNA-seq的count数据啦!大家都知道芯片数据跟RNA-seq数据的本质就是value的分布不一样,所以各种针对RNA-seq的差异分析包也就是提出来一个新的normalization方法而已。而我们limma本身就提出了一个voom的方法来对RNA-seq数据进行normalization
使用这个包也需要三个数据:

  • 表达矩阵
  • 分组矩阵
  • 差异比较矩阵

用法与limma一模一样的,只是多了一个normalization而已。

读取自己的数据

一般我们会自己读取表达矩阵和分组信息,下面是一个例子:

  1. options(warn=-1)
  2. suppressMessages(library(DESeq2))
  3. suppressMessages(library(limma))
  4. suppressMessages(library(pasilla))
  5. data(pasillaGenes)
  6. exprSet=counts(pasillaGenes)
  7. head(exprSet) ##表达矩阵如下
  8. ## treated1fb treated2fb treated3fb untreated1fb untreated2fb
  9. ## FBgn0000003 0 0 1 0 0
  10. ## FBgn0000008 78 46 43 47 89
  11. ## FBgn0000014 2 0 0 0 0
  12. ## FBgn0000015 1 0 1 0 1
  13. ## FBgn0000017 3187 1672 1859 2445 4615
  14. ## FBgn0000018 369 150 176 288 383
  15. ## untreated3fb untreated4fb
  16. ## FBgn0000003 0 0
  17. ## FBgn0000008 53 27
  18. ## FBgn0000014 1 0
  19. ## FBgn0000015 1 2
  20. ## FBgn0000017 2063 1711
  21. ## FBgn0000018 135 174
  22. group_list=pasillaGenes$condition
  23. ## [1] treated treated treated untreated untreated untreated untreated
  24. ## Levels: treated untreated
  25. ##这是分组信息,7个样本,3个处理的,4个未处理的对照!

另外一个例子是从airway里面得到表达矩阵和分组信息

  1. library(airway)
  2. data(airway)
  3. exprSet=assays(airway)$counts ## 表达矩阵
  4. group_list=colData(airway)$dex ## 分组信息

第一步:构建分组矩阵

  1. suppressMessages(library(limma))
  2. design <- model.matrix(~factor(group_list))
  3. colnames(design)=levels(factor(group_list))
  4. rownames(design)=colnames(exprSet)
  5. design
  6. ## treated untreated
  7. ## treated1fb 1 0
  8. ## treated2fb 1 0
  9. ## treated3fb 1 0
  10. ## untreated1fb 1 1
  11. ## untreated2fb 1 1
  12. ## untreated3fb 1 1
  13. ## untreated4fb 1 1
  14. ## attr(,"assign")
  15. ## [1] 0 1
  16. ## attr(,"contrasts")
  17. ## attr(,"contrasts")$`factor(group_list)`
  18. ## [1] "contr.treatment"

第二步:根据分组信息和表达矩阵进行normalization

这里构建了一个对象 An object of class “EList”

  1. v <- voom(exprSet,design,normalize="quantile")
  2. ## 下面的代码如果你不感兴趣不需要运行,免得误导你
  3. ## 就是看看normalization前面的数据分布差异
  4. #png("RAWvsNORM.png")
  5. exprSet_new=v$E
  6. par(cex = 0.7)
  7. n.sample=ncol(exprSet)
  8. if(n.sample>40) par(cex = 0.5)
  9. cols <- rainbow(n.sample*1.2)
  10. par(mfrow=c(2,2))
  11. boxplot(exprSet, col = cols,main="expression value",las=2)
  12. boxplot(exprSet_new, col = cols,main="expression value",las=2)
  13. hist(exprSet)
  14. hist(exprSet_new)
  15. #dev.off()

image.png
可以很明显看到normalization前后数据分布差异非常大!

第三步:做差异分析,提取差异分析结果

这里不需要差异比较矩阵了,因为我的分组矩阵表明样本就分成两组,直接提取coef=2的数据即可

  1. fit <- lmFit(v,design)
  2. fit2 <- eBayes(fit)
  3. tempOutput = topTable(fit2, coef=2, n=Inf)
  4. DEG_voom = na.omit(tempOutput)
  5. head(DEG_voom)
  6. ## logFC AveExpr t P.Value adj.P.Val
  7. ## FBgn0029167 2.1608689 7.880589 41.19142 5.195806e-08 0.0007518331
  8. ## FBgn0003137 -0.9560776 8.421903 -29.97211 2.920473e-07 0.0021129620
  9. ## FBgn0003748 -1.0385933 6.395990 -23.78787 1.020682e-06 0.0049230892
  10. ## FBgn0035085 2.5190255 5.221183 21.01339 1.993995e-06 0.0058809216
  11. ## FBgn0050185 -0.4886279 5.487547 -19.95422 2.635106e-06 0.0058809216
  12. ## FBgn0015568 -1.1040979 3.922438 -19.96954 2.624231e-06 0.0058809216
  13. ## B
  14. ## FBgn0029167 9.065020
  15. ## FBgn0003137 7.800063
  16. ## FBgn0003748 6.652695
  17. ## FBgn0035085 5.870585
  18. ## FBgn0050185 5.734162
  19. ## FBgn0015568 5.55756

差异分析结果就不解释啦!
原文来自:www.bio-info-trainee.com